AB-PAS染色液产品介绍

产品简介：

AB-PAS 染色液核心成分为阿利新蓝染色液和Schiff Reagent，多用于黏液物质染色，糖原、中性黏蛋白、各种糖蛋白呈紫红色，其余呈蓝色。该试剂仅用于科研领域，不适用于临床诊断或其他用途。

产品组成：

自备材料：

1、 蒸馏水、系列乙醇

2、 二甲苯或环保脱蜡透明液、中性树胶

操作步骤(仅供参考)：
1、二甲苯或脱蜡透明液脱蜡至水，蒸馏水洗 2min。
2、入阿利新蓝染色液染色 10～20 min。
3、蒸馏水洗3次，每次 1～2min。
4、入过碘酸溶液氧化 5min。
5、入 Schiff Reagent，5 浸染 10～20min。

6、倾去 Schiff Reagent，流水冲洗 10min。
7、(可选)入苏木素染色液染核 1～2min。

8、用酸性分化液分化 2～5s，水洗。
9、用 Scott 蓝化液返蓝，水洗 3min。
10、逐级常规乙醇脱水，二甲苯或 脱蜡透明液透明，中性树胶封固。

染色结果：

备注：含有中性黏蛋白和酸性黏蛋白的细胞或组织可染成不同程度的蓝紫色至紫色。

注意事项：

1、切片脱蜡应尽量干净，否则影响染色效果。

2、过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时的温度以18～22℃最佳。

3、阿利新蓝染色液、过碘酸溶液、Schiff Reagent 均应置于4℃密闭保存，使用时避免接触过多阳光和空气；使用前最好提前30min 取出恢复至室温，避光暗处使用。

4、酸性分化液应经常更换新液，分化时间应该依据切片厚薄、组织类别和酸性分化液的新旧而定，另外分化后自来水冲洗时间应该足够。

5、切片在过碘酸溶液和 Schiff Reagent 中作用时间非常重要，该依据切片厚薄、组织类别等决定。

6、用苏木素染色液复染细胞核时应淡染，以免影响阳性物质AB的观察。目的是防止胞浆或黏蛋白着色而掩盖阿利新蓝的颜色。

7、阿利新蓝-PAS 联合技术的染色顺序可影响最终结果，PAS 技术在阿尔辛蓝染色之前时， 中性黏蛋白和糖原可染成紫色；与此相反，阿利新蓝染色在PAS技术之前时，则可将这些物质染成预期的紫红色。

8、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

9、试剂开封后请尽快使用，以防影响后续实验效果。

有效期：12个月有效。低温运输，按要求保存